Estudio fisiológico de Canna indica (Cannaceae), una Fuente Alimenticia, en Medios de Cultivo no Convencionales
Palabras clave:
Almidón, Ambientes extremos, Canna indica, Hidroponía, Planta alimenticiaResumen
Canna indica, originaria de América tropical, es una hierba perenne y rizomatosa con gran valor nutricional, medicinal (rizomas), forrajera (rizomas y follaje molidos) y ornamental. Nuestro objetivo fue hallar un sustrato óptimo para el cultivo de esta especie, con fines alimenticios, en condiciones no aptas para un cultivo convencional. Las plantas se cultivaron en un invernáculo, entre los meses de septiembre y diciembre del año 2018, en macetas de 13,5 L, utilizando diferentes sustratos: arena, hidroponía en solución de Hoagland perlita, tierra y vermiculita. En cada maceta se colocaron dos fragmentos de rizoma de 10 x 3,0-4,0 cm, con tres repeticiones por tratamiento. Se evaluaron los siguientes parámetros: altura alcanzada de la parte aérea (tallo, hoja, inflorescencia y fruto); área foliar; peso fresco y peso seco de la parte subterránea (raíz y rizoma) y de la parte aérea (tallo, hoja, inflorescencia e infrutescencia); clorofila a, b, total y carotenos (tallo y hojas); albúminas (rizomas); y densidad de granos de almidón (rizomas). Los resultados se analizaron mediante el software Statistica 7.0. Al finalizar el ensayo, las plantas que lograron un mayor crecimiento, con formación de frutos maduros, fueron las cultivadas en los sustratos hidroponía en solución y vermiculita.
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Antillón, L. A. (2004). Hidroponía, Cultivo sin tierra. (1º Ed). Editorial Tecnológica de Costa Rica.
Barrera , V. H., Tapia, C. G., & Monteros, A. R. (Eds.). 2004. Raíces y Tubérculos Andinos: Alternativas para la conservación y uso sostenible en el Ecuador. Serie: Conservación y uso de la biodiversidad de raíces y tubérculos andinos. Una década de investigación para el desarrollo (1993-2003). No.4. Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias, Centro Internacional de la Papa, Agencia Suiza para el Desarrollo y la Cooperación. Quito, Ecuador - Lima, Perú.
Beltrano, J., & Gimenez, D. O. (2015). Cultivo en hidroponía. Editorial de la Universidad Nacional de La Plata (EDULP). https://doi.org/10.35537/10915/46752
Bradford, M. M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 248-254. https://doi.org/10.1006/abio.1976.9999
Bueno Prieto, J. E., & Martínez Frías, J. (2021). Desierto de la Tatacoa: Marte en Colombia. https://doi.org/10.21028/jbp.2021.12.09
Cabrera, A. L. (1976). Regiones Fitogeográficas Argentinas. Enciclopedia Argentina de Agricultura y Jardinería. Fasciculo I, Tomo II, (2º Ed,), ACME S.A.C.I, Buneos Aires, Argentina.
Cañar Inga, E. A., & Paguay Verdugo, E. M. (2017). Estandarización de la técnica de microdilución de actividad antifúngica de extractos hidrofílicos y liofílicos de plantas medicinales frente a Candida albicans. Facultad de Ciencias químicas Carrea de Bioquímica y Farmacia. Ecuador [tesis doctoral, Universidad de Cuenca].
Chavarría-Torrez, A., & Castillo-Castro, S. D. (2018). El forraje verde hidropónico (FVH), de maíz como alternativa alimenticia y nutricional para todos los animales de la granja. Revista Iberoamericana de Bioeconomía y Cambio Climático, 4 (8), 1032-1039. https://doi.org/10.5377/ribcc.v4i8.6716
Cowles, J. R., LeMay, R., Jahns, G., Scheld, W. H., & Peterson, C. (1989). Lignification in young plant seedlings grown on earth and aboard the space shuttle. En: Lewis N. G. & Paice M. G. (Eds.). Plant Cell Wall Polymers. Biogenesis and Biodegradation. ACS Symposium Series. American Chemical Society; Washington, DC, USA, 399, 203-213. https://doi.org/10.1021/bk-1989-0399.ch015
D’Ambrogio, A. (1986). Manual de técnicas en histología vegetal. Hemisferio Sur, Buenos Aires, Argentina.
Espinosa, P., Vaca, R., Abad, J., & Crissman, C. (1997). Raíces y tubérculos andinos. Cultivos marginados en el Ecuador: situación actual y limitaciones para la producción. Ediciones Abya-Yala. Quito, Ecuador.
Figueroa Cardozo, Y., & Galeano, G. (2004). Guía ilustrada de la flora del Desierto de la Tatacoa, Huila, Colombia. Acta Biológica Colombiana, 29(2), 263-281.
Florez Molina, M.T., Parra Sánchez, L. N., Jaramillo Jaramillo, D.F., & Jaramillo Mejía, J.M. (2018). Evidencias macromorfológicas y micromorfológicas de paleosuelos en el desierto de La Tatacoa y su variación sincrónica. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, 42(165), 422-438. https://doi.org/10.18257/raccefyn.702
Godia, F., Albiol, J., Perez, J., Creus, N., Cabello, F., Montras, A., Masot, A., & Lasseur, C. (2004). The MELISSA pilot plant facility as an integration test-bed for advanced life support systems. Advances in Space Research, 34,1483–1493. https://doi.org/10.1016/j.asr.2003.08.038
Grau, R. H., Babot, M. J., Izquierdo, A. E., & Grau, A. (2018). La Puna Argentina: naturaleza y cultura. Serie Conservación de la Naturaleza Nº 24. https://doi.org/10.1659/mrd.mm233
Hendrickx, L., de Wever, H., Hermans, V., Mastroleo, F., Morin, N., Wilmotte, A., Janssen, P., & Konnerup, D., & Brix, H. (2010). Nitrogen nutrition of Canna indica: effects of ammonium versus nitrate on growth, biomass allocation, photosynthesis, nitrate reductase activity and N uptake rates. Aquatic Botany, 92 (2), 142-148. https://doi.org/10.1016/j.aquabot.2009.11.004
Hernández, M .P., Civitella, S. M. &, Rosato,V. G. (2010). Uso medicinal popular de plantas y líquenes de la Isla Paulino, Provincia de Buenos Aires, Argentina. Boletín Latinoamericano del Caribe Plantas Medicinales Aromáticas, 9(4), 258-269.
Hernández, M., P. ,& Arambarri , A.,M. (2019). Variación estacional de la densidad de granos de almidón en rizomas de Canna glauca y C. indica (Cannaceae). Lilloa, 56(2), 37–46. https://doi.org/10.30550/j.lil/2019.56.2/3
Hernández, M. P., Calonge, F. S., Morandi, L. A. , Katinas, L., & Arambarri, A. M. (2019). Uso tradicional de las plantas puneñas en la localidad Tolar Grande, Provincia de Salta (Argentina). XXXVII Jornadas Argentinas de Botánica, Tucumán, Argentina. Boletín de la Sociedad Argentina de Botánica, 54 (Supl.), 174-175.
Hernández, M.P., Carbone, A.V., Katinas, L., Arambarri, A, M., Carrasquero, S., Morandi, L. A., Calonge, F., Araujo, M., & Gutiérrez, M. T. (2020). Plantas vasculares puneñas y altoandinas de la provincia de Salta (Argentina) para la terraformación del planeta Marte. V Congreso Internacional de Astrobiología. Instituto de Astrobiología de Colombia (IAC). Universidad de Atlántico, Bogotá. Colombia.
Hurrell, J. A., Bazzano, D. H. &, Delucchi, G. (2005). Monocotiledóneas Herbáceas Nativas y Exóticas. En Hurrell, J. A. (ed.). Biota Rioplatense X, 1-320. Buenos Aires, Lola.
Jost, A. I., Hoson, T. &, Iversen, T. H. (2015). The Utilization of Plant Facilities on the International Space Station-The Composition, Growth, and Development of Plant Cell Walls under Microgravity Conditions. Plants (Basel, Switzerland), 4(1), 44–62. https://doi.org/10.3390/plants4010044
Karoliussen, I. B. , & Kittang, A. I. (2013). Will plants grow on Moon or Mars?. Current Biotechnology, 2(3), 235–243. https://doi: 10.2174/22115501113029990019
Ivanova, T. N., Bercovich, Y . A., Mashinskiy, A. L., & Meleshko, G. I. (1993). The 1st space vegetables have been grown in the svet greenhouse using controlled environmental-conditions. Acta Astronautica. 29: 639–644. https://doi.org/10.1016/0094-5765(93)90082-8
MacElroy, R. D. (1974). Some comments on the evolution of extremophiles. Biosystems, 6, 74-75.
Martínez Crovetto, R. 1981. Plantas utilizadas en medicina en el noroeste de Corrientes (República Argentina)”. Fundación Miguel Lillo. Miscelánea, 69, 1-139.
Marzocca, A. (1993). Vademécum de Malezas Medicinales de la Argentina indígenas y exóticas. Orientación Gráfica Editorial S.R.L., Buenos Aires, Argentina.
Medina, F. J. (2020). Space explorers need to be space farmer. What we know and what we need to know about plant growth in space. University of Valencia, Metode Science Studies Journal, 11, 55-62. https://doi.org/10.7203/metode.11.14606
Monje, C. (2001). La Tatacoa. Ecosistema estratégico de Colombia. Editorial Universidad Surcolombiana.
Montaldi, E. R. (1995). Principios de Fisiología Vegetal. (1º Ed.). Ediciones Sur, La Plata, Argentina.
Morales López, D. A. (2019). Proyecto para la elaboración y comercialización de té de achira en la ciudad de Quito-Ecuador [tesis doctoral, Universidad Central del Ecuador].
Moreno, N. R. (2007). Manual de producción de tomate rojo bajo condiciones de invernadero para el calle de Mexicali, Baja California. Fundación produce, gobierno de Baja California, México.
Musgrave, M. E. (2007). Growing plants in space. CAB Reviews: Perspectives. In Agriculture, Vetetinary Science, Nutrition ando Natural Resourses, 2 No. 065. https://doi.org/10.1079/PAVSNNR20072065
Paradiso, R., de Micco, V., Buonomo, R., Aronne, G., Barbieri, G., & de Pascale, S. (2014). Soilless cultivation of soybean for bioregenerative life-support systems: A literature review and the experience of the MELISSA project - Food characterisation phase I. Plant Biology,16, 69 –78. https://doi.org/10.1111/plb.12056
Pocchetino, M.L. (2015). Botánica económica. Las plantas interpretadas según tiempo, espacio y cultura. Sociedad Argentina de Botánica.
Popenoe, H., King, S. R., León, J., & Sumar Kalinowsky, L. (1990). Lost Crops of the Incas. National Academy Press. Washington D. C., 3-15.
Rapoport, E. H., Marzocca, A., & Drausal, B.S. (2009). Malezas comestibles del Cono Sur y otras partes del planeta. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria, Universidad Nacional del Comahue.
Rendón, J. B., & Ramírez Jiménez, E. A. (2012). Espacios globales y resistencias locales, en el bosque seco tropical La Tatacoa. Ciudad Paz-ando, 5(1), 137-150. https://doi.org/10.14483/2422278X.7295
Rodríguez Borray, G. A., García Bernal, H. R., Camacho Tamayo, J. H., & Arias, F. L. (2003). El almidón de achira o sagú (Canna edulis Ker). Manual Técnico para su elaboración.
Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria. Subdirección de Investigación e Innovación Tecnológica. Programa Nacional de Procesos Agroindustriales. Colombia.
Romero Vásquez, S. M., & Valdez Valles, J. A. (2016). Capacidad antioxidante in vitro de los flavonoides totales del estracto fluido de las hojas de Canna indica L. (achira) frente al radical libre 2,2-difetil-1-picrilhidracilo [tesis doctoral, Universidad Nacional de Trujillo].
Ruyters, G., & Braun, M. (2014). Plant biology in space: recent accomplishments and recommendations for future research. Plant Biology, 16: 4–11. https://doi.org/10.1111/plb.12127
Wellburn, A. R. (1994). The spectral determination of chlorophylls A and B, as well as Total caroteinds, using various solvents with Spectrophotometers of different resolutions. Journal of Plant Physiology, 144, 307-313. https://doi.org/10.1016/S0176-1617(11)81192-2
Yaruro Cáceres, N. C., Suárez Mahecha, H., de Francisco, A., Vásquez Mejía, S. M., & Daz Moreno, C. (2021). Physicochemical, thermal, microstructural and paste properties comparison of four achira (Canna edulis sp.) starch ecotypes. International Journal of Gastronomy and Food Science, 25. https://doi.org/10.1016/j.ijgfs.2021.100380
Zabel, P., Bamsey, M., Schubert, D., & Tajmar, M. (2016). Review and analysis of over 40 years of space plant growth systems. Life Sciences in Space Research, 10, 1-16. https://doi.org/10.1016/j.lssr.2016.06.004
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